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Erschienen in: Wiener klinisches Magazin 6/2021

24.09.2021 | Pathologie

Next Generation Sequencing in der Pathologie

Anwendungen und methodische Herausforderungen

verfasst von: Univ.-Prof. Dr. Ulrich Lehmann, Prof. Dr. Andreas Jung

Erschienen in: Wiener klinisches Magazin | Ausgabe 6/2021

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Zusammenfassung

Die enorme Beschleunigung der DNA-Sequenzierung durch die Entwicklung der Next-Generation-Sequencing-Technologien eröffnet dem Fach Pathologie nicht nur völlig neue Möglichkeiten in Forschung und Diagnostik, sondern stellt es auch vor große Herausforderungen.
Der Nachweis zahlreicher genomischer Alterationen (Punktmutationen, kleine Insertionen und Deletionen, Fusionstranskripte, Tumormutationslast [TMB]) wird bereits zuverlässig in der molekularpathologischen Routinediagnostik eingesetzt. Diese werden in absehbarer Zeit durch zahlreiche weitere Anwendungen (Genamplifikationen, Mikrosatelliteninstabilität, genomische Signaturen wie homologe Rekombinationsdefizienz (HRD), mRNA-Profile, B‑ und T‑Zellklonalität, DNA-Methylierung) ergänzt werden.
Herausforderungen in der Präanalytik, der Beurteilung der Assaysensitivität und -spezifität sowie der Bewertung der identifizierten Aberrationen (Variantenbewertung), die die Ausbildung und den Einsatz neuer Fachkräfte erfordern, werden dargestellt und diskutiert.
Glossar
Begriffe
Alignment
Abbildung erhaltener Sequenzen auf ein Referenzgenom (aktuell für humane Sequenzen: meist hg19), nach wie vor computertechnisch nicht 100 % fehlerfrei gelöst
BAM
„Binary alignment map“, binäres Format zur Speicherung von Sequenzdaten, komprimierte Version eines SAM-Files. SAM-Files sind wie Texte lesbar, BAM-Files nicht
BCL
„Binary base call“, enthält Daten zu jeder einzelnen identifizierten Base, muss in ein FASTQ-File umformatiert werden (sind sehr groß)
BED
„Browser extensible data“, enthält zusätzliche Informationen, z. B. Abschnitte des menschlichen Genoms in einem NGS-Panel (genomischen Koordinaten aller Amplikons)
Chip
Mikrowell-Array, in dem die IonTorrent-Sequenzierung stattfindet
FASTQ
Textbasiertes Format, vereinigt Sequenzinformation und zugehörige Qualitätsparameter
flow cell
Reaktionskammer, in der die Illumina-Sequenzierung stattfindet
vcf
„Variant call format“, enthält eine Liste der identifizierten Varianten mit statistischen Informationen
vus/uv
„Variant of unknown significance, unclassified variant“
Qualitätsparameter
Aligned Reads
Anteil der Sequenzen (in %), die korrekt zugeordnet werden konnten, abhängig von der Qualität der Sequenzen
Lesetiefe an der
Häufigkeit, mit der eine gegeben Position sequenziert wurde
Mittlere Lesetiefe
Durchschnittliche Häufigkeit, mit der alle Positionen sequenziert wurden
Phred score
Maß für die Wahrscheinlichkeit, dass die Base an einer gegebenen Position korrekt erkannt wurde. Ein Phred Score von 30 entspricht einer 99,9 %igen Wahrscheinlichkeit für die Richtigkeit der Sequenz.
Read-Ausbeute
Gesamtzahl der erhaltenen Sequenzen, abhängig von der Panelgröße (Zahl der Exons bzw. Gene) und der Zahl der parallel in einem Lauf sequenzierten Proben
Strand bias
Eine Variante findet sich überwiegend nur in einem der beiden DNA-Stränge, sollte i. d. R. nicht größer als 80:20 bzw. kleiner als 20:80 sein
VAF/MAF
„Variant allele frequency, mutant allele frequency“, Anteil der varianten Sequenz (in %) an der Zahl aller Sequenzen für diese Position
Varianten Position
Kann von der mittleren Lesetiefe erheblich abweichen
Literatur
1.
Zurück zum Zitat Alexandrov LB, Kim J, Haradhvala NJ et al (2020) The repertoire of mutational signatures in human cancer. Nature 578:94–101CrossRef Alexandrov LB, Kim J, Haradhvala NJ et al (2020) The repertoire of mutational signatures in human cancer. Nature 578:94–101CrossRef
2.
Zurück zum Zitat Bartels S, Schipper E, Kreipe H et al (2015) Comprehensive molecular profiling of archival bone marrow trephines using a commercially available leukemia panel and semiconductor-based targeted resequencing. PLoS ONE 10:e133930CrossRef Bartels S, Schipper E, Kreipe H et al (2015) Comprehensive molecular profiling of archival bone marrow trephines using a commercially available leukemia panel and semiconductor-based targeted resequencing. PLoS ONE 10:e133930CrossRef
3.
Zurück zum Zitat Bhalla A, Zulfiqar M, Bluth MH (2018) Molecular diagnostics in colorectal carcinoma: advances and applications for 2018. Clin Lab Med 38:311–342CrossRef Bhalla A, Zulfiqar M, Bluth MH (2018) Molecular diagnostics in colorectal carcinoma: advances and applications for 2018. Clin Lab Med 38:311–342CrossRef
4.
Zurück zum Zitat Blidner RA, Haynes BC, Hyter S et al (2019) Design, optimization, and multisite evaluation of a targeted next-generation sequencing assay system for chimeric RNAs from gene fusions and exon-skipping events in non-small cell lung cancer. J Mol Diagn 21:352–365CrossRef Blidner RA, Haynes BC, Hyter S et al (2019) Design, optimization, and multisite evaluation of a targeted next-generation sequencing assay system for chimeric RNAs from gene fusions and exon-skipping events in non-small cell lung cancer. J Mol Diagn 21:352–365CrossRef
5.
Zurück zum Zitat Callier SL, Abudu R, Mehlman MJ et al (2016) Ethical, legal, and social implications of personalized genomic medicine research: current literature and suggestions for the future. Bioethics 30:698–705CrossRef Callier SL, Abudu R, Mehlman MJ et al (2016) Ethical, legal, and social implications of personalized genomic medicine research: current literature and suggestions for the future. Bioethics 30:698–705CrossRef
6.
Zurück zum Zitat Davies KD, Aisner DL (2019) Wake up and smell the fusions: single-modality molecular testing misses drivers. Clin Cancer Res 25:4586–4588CrossRef Davies KD, Aisner DL (2019) Wake up and smell the fusions: single-modality molecular testing misses drivers. Clin Cancer Res 25:4586–4588CrossRef
7.
Zurück zum Zitat Davies KD, Lomboy A, Lawrence CA et al (2019) DNA-based versus RNA-based detection of MET exon 14 skipping events in lung cancer. J Thorac Oncol 14:737–741CrossRef Davies KD, Lomboy A, Lawrence CA et al (2019) DNA-based versus RNA-based detection of MET exon 14 skipping events in lung cancer. J Thorac Oncol 14:737–741CrossRef
8.
Zurück zum Zitat Foo T, George A, Banerjee S (2021) PARP inhibitors in ovarian cancer: an overview of the practice-changing trials. Genes Chromosomes Cancer 60(5):385–397CrossRef Foo T, George A, Banerjee S (2021) PARP inhibitors in ovarian cancer: an overview of the practice-changing trials. Genes Chromosomes Cancer 60(5):385–397CrossRef
9.
Zurück zum Zitat Gainor JF, Dardaei L, Yoda S et al (2016) Molecular mechanisms of resistance to first- and second-generation ALK inhibitors in ALK-rearranged lung cancer. Cancer Discov 6:1118–1133CrossRef Gainor JF, Dardaei L, Yoda S et al (2016) Molecular mechanisms of resistance to first- and second-generation ALK inhibitors in ALK-rearranged lung cancer. Cancer Discov 6:1118–1133CrossRef
10.
Zurück zum Zitat Goodwin S, McPherson JD, McCombie WR (2016) Coming of age: ten years of next-generation sequencing technologies. Nat Rev Genet 17:333–351CrossRef Goodwin S, McPherson JD, McCombie WR (2016) Coming of age: ten years of next-generation sequencing technologies. Nat Rev Genet 17:333–351CrossRef
11.
Zurück zum Zitat Heather JM, Chain B (2016) The sequence of sequencers: the history of sequencing DNA. Genomics 107:1–8CrossRef Heather JM, Chain B (2016) The sequence of sequencers: the history of sequencing DNA. Genomics 107:1–8CrossRef
12.
Zurück zum Zitat Hochhaus A, Breccia M, Saglio G et al (2020) Expert opinion-management of chronic myeloid leukemia after resistance to second-generation tyrosine kinase inhibitors. Leukemia 34:1495–1502CrossRef Hochhaus A, Breccia M, Saglio G et al (2020) Expert opinion-management of chronic myeloid leukemia after resistance to second-generation tyrosine kinase inhibitors. Leukemia 34:1495–1502CrossRef
13.
Zurück zum Zitat Hofman P (2019) The challenges of evaluating predictive biomarkers using small biopsy tissue samples and liquid biopsies from non-small cell lung cancer patients. J Thorac Dis 11:S57–S64CrossRef Hofman P (2019) The challenges of evaluating predictive biomarkers using small biopsy tissue samples and liquid biopsies from non-small cell lung cancer patients. J Thorac Dis 11:S57–S64CrossRef
14.
15.
Zurück zum Zitat Kling T, Wenger A, Beck S et al (2017) Validation of the MethylationEPIC BeadChip for fresh-frozen and formalin-fixed paraffin-embedded tumours. Clin Epigenetics 9:33CrossRef Kling T, Wenger A, Beck S et al (2017) Validation of the MethylationEPIC BeadChip for fresh-frozen and formalin-fixed paraffin-embedded tumours. Clin Epigenetics 9:33CrossRef
16.
Zurück zum Zitat Kofanova O, Bellora C, Garcia Frasquilho S et al (2020) Standardization of the preanalytical phase of DNA extraction from fixed tissue for next-generation sequencing analyses. N Biotechnol 54:52–61CrossRef Kofanova O, Bellora C, Garcia Frasquilho S et al (2020) Standardization of the preanalytical phase of DNA extraction from fixed tissue for next-generation sequencing analyses. N Biotechnol 54:52–61CrossRef
17.
Zurück zum Zitat Krook MA, Reeser JW, Ernst G et al (2021) Fibroblast growth factor receptors in cancer: genetic alterations, diagnostics, therapeutic targets and mechanisms of resistance. Br J Cancer 124(5):880–892CrossRef Krook MA, Reeser JW, Ernst G et al (2021) Fibroblast growth factor receptors in cancer: genetic alterations, diagnostics, therapeutic targets and mechanisms of resistance. Br J Cancer 124(5):880–892CrossRef
18.
Zurück zum Zitat Lander ES, Linton LM, Birren B et al (2001) Initial sequencing and analysis of the human genome. Nature 409:860–921CrossRef Lander ES, Linton LM, Birren B et al (2001) Initial sequencing and analysis of the human genome. Nature 409:860–921CrossRef
19.
Zurück zum Zitat Lay L, Stroup B, Payton JE (2020) Validation and interpretation of IGH and TCR clonality testing by Ion Torrent S5 NGS for diagnosis and disease monitoring in B and T cell cancers. Pract Lab Med 22:e191CrossRef Lay L, Stroup B, Payton JE (2020) Validation and interpretation of IGH and TCR clonality testing by Ion Torrent S5 NGS for diagnosis and disease monitoring in B and T cell cancers. Pract Lab Med 22:e191CrossRef
20.
Zurück zum Zitat Leichsenring J, Horak P, Kreutzfeldt S et al (2019) Variant classification in precision oncology. Int J Cancer 145:2996–3010CrossRef Leichsenring J, Horak P, Kreutzfeldt S et al (2019) Variant classification in precision oncology. Int J Cancer 145:2996–3010CrossRef
21.
Zurück zum Zitat Li GZ, Raut CP (2019) Targeted therapy and personalized medicine in gastrointestinal stromal tumors: drug resistance, mechanisms, and treatment strategies. Onco Targets Ther 12:5123–5133CrossRef Li GZ, Raut CP (2019) Targeted therapy and personalized medicine in gastrointestinal stromal tumors: drug resistance, mechanisms, and treatment strategies. Onco Targets Ther 12:5123–5133CrossRef
22.
Zurück zum Zitat Li MM, Datto M, Duncavage EJ et al (2017) Standards and guidelines for the interpretation and reporting of sequence variants in cancer: a joint consensus recommendation of the Association for Molecular Pathology, American Society of Clinical Oncology, and College of American Pathologists. J Mol Diagn 19:4–23CrossRef Li MM, Datto M, Duncavage EJ et al (2017) Standards and guidelines for the interpretation and reporting of sequence variants in cancer: a joint consensus recommendation of the Association for Molecular Pathology, American Society of Clinical Oncology, and College of American Pathologists. J Mol Diagn 19:4–23CrossRef
23.
Zurück zum Zitat Lowe P, Olinski R, Ruzov A (2021) Evidence for noncytosine epigenetic DNA modifications in multicellular eukaryotes: an overview. Methods Mol Biol 2198:15–25CrossRef Lowe P, Olinski R, Ruzov A (2021) Evidence for noncytosine epigenetic DNA modifications in multicellular eukaryotes: an overview. Methods Mol Biol 2198:15–25CrossRef
24.
Zurück zum Zitat Merkelbach-Bruse S, Rehker J, Siemanowski J et al (2019) Detection and interpretation of somatic variants in molecular pathology. Pathologe 40:243–249CrossRef Merkelbach-Bruse S, Rehker J, Siemanowski J et al (2019) Detection and interpretation of somatic variants in molecular pathology. Pathologe 40:243–249CrossRef
25.
Zurück zum Zitat Preusser M (2009) MGMT analysis at DNA, RNA and protein levels in glioblastoma tissue. Histol Histopathol 24:511–518PubMed Preusser M (2009) MGMT analysis at DNA, RNA and protein levels in glioblastoma tissue. Histol Histopathol 24:511–518PubMed
27.
Zurück zum Zitat Richards S, Aziz N, Bale S et al (2015) Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet Med 17:405–424CrossRef Richards S, Aziz N, Bale S et al (2015) Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet Med 17:405–424CrossRef
28.
Zurück zum Zitat Sankar PL, Parker LS (2017) The Precision Medicine Initiative’s All of Us Research Program: an agenda for research on its ethical, legal, and social issues. Genet Med 19:743–750CrossRef Sankar PL, Parker LS (2017) The Precision Medicine Initiative’s All of Us Research Program: an agenda for research on its ethical, legal, and social issues. Genet Med 19:743–750CrossRef
29.
Zurück zum Zitat Stenzinger A, Endris V, Budczies J et al (2020) Harmonization and standardization of panel-based tumor mutational burden measurement: real-world results and recommendations of the quality in pathology study. J Thorac Oncol 15:1177–1189CrossRef Stenzinger A, Endris V, Budczies J et al (2020) Harmonization and standardization of panel-based tumor mutational burden measurement: real-world results and recommendations of the quality in pathology study. J Thorac Oncol 15:1177–1189CrossRef
30.
Zurück zum Zitat Venter JC, Adams MD, Myers EW et al (2001) The sequence of the human genome. Science 291:1304–1351CrossRef Venter JC, Adams MD, Myers EW et al (2001) The sequence of the human genome. Science 291:1304–1351CrossRef
31.
Zurück zum Zitat Weller M, Stupp R, Reifenberger G et al (2010) MGMT promoter methylation in malignant gliomas: ready for personalized medicine? Nat Rev Neurol 6:39–51CrossRef Weller M, Stupp R, Reifenberger G et al (2010) MGMT promoter methylation in malignant gliomas: ready for personalized medicine? Nat Rev Neurol 6:39–51CrossRef
32.
Zurück zum Zitat Wen YZ, Zheng LL, Qu LH et al (2012) Pseudogenes are not pseudo any more. RNA Biol 9:27–32CrossRef Wen YZ, Zheng LL, Qu LH et al (2012) Pseudogenes are not pseudo any more. RNA Biol 9:27–32CrossRef
33.
Zurück zum Zitat Westphalen BC, Bokemeyer C, Buttner R et al (2020) Conceptual framework for precision cancer medicine in Germany: consensus statement of the Deutsche Krebshilfe working group ‘Molecular Diagnostics and Therapy. Eur J Cancer 135:1–7CrossRef Westphalen BC, Bokemeyer C, Buttner R et al (2020) Conceptual framework for precision cancer medicine in Germany: consensus statement of the Deutsche Krebshilfe working group ‘Molecular Diagnostics and Therapy. Eur J Cancer 135:1–7CrossRef
34.
Zurück zum Zitat Xiao T, Zhou W (2020) The third generation sequencing: the advanced approach to genetic diseases. Transl Pediatr 9:163–173CrossRef Xiao T, Zhou W (2020) The third generation sequencing: the advanced approach to genetic diseases. Transl Pediatr 9:163–173CrossRef
35.
Zurück zum Zitat Yamamoto H, Imai K (2019) An updated review of microsatellite instability in the era of next-generation sequencing and precision medicine. Semin Oncol 46:261–270CrossRef Yamamoto H, Imai K (2019) An updated review of microsatellite instability in the era of next-generation sequencing and precision medicine. Semin Oncol 46:261–270CrossRef
Metadaten
Titel
Next Generation Sequencing in der Pathologie
Anwendungen und methodische Herausforderungen
verfasst von
Univ.-Prof. Dr. Ulrich Lehmann
Prof. Dr. Andreas Jung
Publikationsdatum
24.09.2021
Verlag
Springer Vienna
Erschienen in
Wiener klinisches Magazin / Ausgabe 6/2021
Print ISSN: 1869-1757
Elektronische ISSN: 1613-7817
DOI
https://doi.org/10.1007/s00740-021-00411-2

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