Skip to main content
Log in

Exakte Messung des Volumeneffektes von 6%iger Hydroxyethylstärke 130/0,4 (Voluven®) während präoperativer akuter normovolämer Hämodilution

  • Originalien
  • Published:
Der Anaesthesist Aims and scope Submit manuscript

Zusammenfassung

Fragestellung

Welchen Einfluss hat die präoperative akute normovoläme Hämodilution (ANH) mit 6%igem HES 130/0,4 (Voluven®) auf das Blutvolumen?

Methodik

Bei 10 Patientinnen mit Zervixkarzinom wurde vor Wertheim-Meigs-Operation unter Verwendung von Voluven® eine ANH bis zu einem Hämatokrit von 21% bei einer geplanten Übersubstitution von 15% durchgeführt. Das Plasmavolumen (Farbstoffverdünnungsmethode mit Indozyaningrün, ICG) und der Hämatokrit wurden vor, 30 min und 60 min nach ANH bestimmt, das Erythrozytenvolumen (Markierung von Erythrozyten mit Fluoreszein) vor und 30 min nach ANH.

Ergebnisse

Durch einen Blutentzug von 1.431±388 ml und eine simultane Kolloidinfusion von 1.686±437 ml stieg das Blutvolumen während ANH im Mittel um 218±174 ml an (auf 105±4% des Ausgangswertes), der Volumeneffekt betrug 30 min nach ANH 98±12%. Auch 60 min nach Dilution lag das mittlere Blutvolumen mit 4.228±986 ml noch über dem Ausgangswert (102±5%). Der Hämatokrit fiel disproportional zum intravasal verbleibenden Volumen ab. Die Abschätzung des Volumeneffektes anhand der Hämatokritveränderungen führte zu falsch-hohen Ergebnissen (rund +30%).

Schlussfolgerung

Mit Hilfe der Double-label-Messung des Blutvolumens zeigte sich während ANH für 6%iges HES 130/0,4 (Voluven®) ein stabiler Volumeneffekt von rund 100%. Der Grund für die festgestellte überproportionale Abnahme des Hämatokrits könnte in einer Mobilisierung eines zuvor innerhalb der endothelialen Glycokalyx festgehaltenen Kompartiments des Plasmavolumens liegen.

Abstract

Background

What is the effect of preoperative acute normovolemic hemodilution (ANH) with 6% hydroxyethyl starch (HES) 130/0.4 (Voluven®) on blood volume?

Methods

In 10 patients undergoing radical hysterectomy, ANH was performed to a hematocrit of 21% using 6% HES 130/0.4 (Voluven®) whereby a replacement of blood with 115% of colloid was planned. Plasma volume (indocyanine green dilution technique) and hematocrit were determined before, 30 and 60 min after ANH. Red cell volume (labelling erythrocytes with fluorescein) was determined before and 30 min after ANH.

Results

After removal of 1,431±388 ml of blood and simultaneous replacement with 1,686±437 ml of colloid, blood volumes were 218±174 ml higher than before (at 105±4%). The volume effect was 98±12%, 30 min after ANH. Even 60 min after ANH, mean blood volumes were with 4,228±986 ml slightly higher than before ANH (102±5%). The hematocrit decreased disproportionally in relation to the residual intravascular volume. Consequently, estimating the volume effect from the changes in hematocrit led to an overestimation (about +30%).

Conclusion

Double label measurements of blood volume demonstrated that the volume effect of 6% HES 130/0.4 (Voluven®) is about 100% in the course of ANH. The reason for the disproportionally large decrease in hematocrits could be the mobilization of a fraction of the plasma volume which was retained within the endothelial glycocalyx.

This is a preview of subscription content, log in via an institution to check access.

Access this article

Price excludes VAT (USA)
Tax calculation will be finalised during checkout.

Instant access to the full article PDF.

Abb. 1
Abb. 2

Literatur

  1. Barbee JH, Cokelet GR (1971) Prediction of blood flow in tubes with diameters as small as 29 microns. Microvasc Res 3:17–21

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  2. Berg S, Golster M, Lisander B (2002) Albumin extravasation and tissue washout of hyaluronan after plasma volume expansion with crystalloid or hypooncotic colloid solutions. Acta Anaesthesiol Scand 46:166–172

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  3. Brauer KI, Svensen C, Hahn RG, Traber LD, Prough DS (2002) Volume kinetic analysis of the distribution of 0.9% saline in conscious versus isoflurane-anesthetized sheep. Anaesthesiology 96:442–449

    CAS  Google Scholar 

  4. Brulisauer M, Bollinger A (1991) Measurement of different human microvascular dimensions by combination of videomicroscopy with Na-fluorescein (NaF) and indocyanine green (ICG) in normals and patients with systemic sclerosis. Int J Microcirc Clin Exp 10:21–31

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  5. Christensen P, Andersson J, Rasmussen SE, Andersen PK, Henneberg SW (2001) Changes in circulating blood volume after infusion of hydroxyethyl starch 6% in critically ill patients. Acta Anaesthesiol Scand 45:414–420

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  6. Constantinescu AA, Vink H, Spaan JA (2001) Elevated capillary tube hematocrit reflects degradation of endothelial cell glycocalyx by oxidized LDL. Am J Physiol Heart Circ Physiol 280:H1051–1057

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  7. Degremont AC, Ismail M, Arthaud M, Oulare B, Mundler O, Paris M, Baron JF (1995) Mechanisms of postoperative prolonged plasma volume expansion with low molecular weight hydroxyethy starch (HES 200/0,62, 6%). Intensive Care Med 21:577–583

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  8. Desjardins C, Duling BR (1987) Microvessel hematocrit: measurement and implications for capillary oxygen transport. Am J Physiol 252:H494–503

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  9. Desjardins C, Duling BR (1990) Heparinase treatment suggests a role for the endothelial cell glycocalyx in regulation of capillary hematocrit. Am J Physiol 258:H647–654

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  10. Drobin D, Hahn RG (2002) Kinetics of isotonic and hypertonic plasma volume expanders. Anesthesiology 96:1371–1380

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  11. Fahraeus R (1928) Die Strömungsverhältnisse und die Verteilung der Blutzellen im Gefäßsystem. Klin Wochenschr 7:100–106

    Google Scholar 

  12. Fischer SR, Burnet M, Traber DL, Prough DS, Kramer GC (1999) Plasma volume expansion with solutions of hemoglobin, albumin, and Ringer lactate in sheep. Am J Physiol 276: H2194–2203

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  13. Förster H, Wicarkzyk C, Duziak R (1981) Bestimmung der Plasmaelimination von Hydroxyethylstärke und von Dextran mittels verbesserter analytischer Methode. Infusionstherapie 2:88–94

    Google Scholar 

  14. Gehan EA, George SL (1970) Estimation of human body surface area from height and weight. Cancer Chemother Rep 54:225–235

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  15. Hahn RG (1987) A haemoglobin dilution method (HDM) for estimation of blood volume variations during transurethral prostatic surgery. Acta Anaesthesiol Scand 31:572–578

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  16. Hahn RG (1988) Blood volume during transurethral prostatic resection. Acta Anaesthesiol Scand 32:629–637

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  17. Haller M, Akbulut C, Brechtelsbauer H, Fett W, Briegel J, Finsterer U, Peter K (1993) Determination of plasma volume with indocyanine green in man. Life Sci 53:1597–1604

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  18. Haskell A, Gillen CM, Mack GW, Nadel ER (1998) Albumin infusion in humans does not model exercise induced hypervolaemia after 24 hours. Acta Physiol Scand 164:277–284

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  19. Henry CB, Duling BR (2000) TNF-alpha increases entry of macromolecules into luminal endothelial cell glycocalyx. Am J Physiol Heart Circ Physiol 279:H2815–2823

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  20. Huxley VH, Williams DA (2000) Role of a glycocalyx on coronary arteriole permeability to proteins: evidence from enzyme treatments. Am J Physiol Heart Circ Physiol 278:H1177–1185

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  21. Keller MW, Damon DN, Duling BR (1994) Determination of capillary tube hematocrit during arteriolar microperfusion. Am J Physiol 266:H2229–2238

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  22. Klitzman B, Duling BR (1979) Microvascular hematocrit and red cell flow in resting and contracting striated muscle. Am J Physiol 237:H481–490

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  23. Lauermann I (1991) Eine neue Methode zur Bestimmung des zirkulierenden Blutvolumens—Erythrozytenmarkierung mit Fluorescein-Natrium. Infusionstherapie 18:130–136

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  24. Montea G, Brulisauer M, Jager K, Bollinger A (1987) Infrared fluorescence videomicroscopy of skin capillaries with indocyanine green. Int J Microcirc Clin Exp 6:25–34

    PubMed  Google Scholar 

  25. Orth V, Rehm M, Thiel M, Kreimeier U, Haller M, Brechtelsbauer H, Finsterer U (1998) First clinical implications of perioperative red cell volume measurement with a nonradioactive marker (sodium fluorescein). Anesth Analg 87:1234–1238

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  26. Pearson TC, Guthrie DL, Simpson J et al. (1995) Interpretation of measured red cell mass and plasma volume in adults: Expert Panel on Radionuclides of the International Council for Standardization in Haematology. Br J Haematol 89:748–756

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  27. Pries AR, Secomb TW, Sperandio M, Gaehtgens P (1998) Blood flow resistance during hemodilution: effect of plasma composition. Cardiovasc Res 37:225–235

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  28. Pries AR, Secomb TW, Gaehtgens P (2000) The endothelial surface layer. Pflugers Arch 440:653–666

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  29. Rehm M, Haller M, Brechtelsbauer H, Akbulut C, Finsterer U (1998) Changes in plasma volume in immediate pre- and postoperative periods in patients with major gynaecologic surgery. Infusionsther Transfusionsmed 25:222–228

    Article  Google Scholar 

  30. Rehm M, Orth V, Kreimeier U, Thiel M, Haller M, Brechtelsbauer H, Finsterer U (2000) Changes in intravascular volume during acute normovolemic hemodilution and intraoperative retransfusion in patients with radical hysterectomy. Anesthesiology 92:657–664

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  31. Rehm M, Haller M, Orth H et al. (2001) Changes in blood volume and hematocrit during acute preoperative volume loading with 5% albumin or 6% hetastarch solutions in patients before radical hysterectomy. Anesthesiology 95:849–856

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  32. Rehm M, Orth V, Kreimeier U, Thiel M, Mayer S, Brechtelsbauer H, Finsterer U (2001) Veränderungen des Blutvolumens während akuter normovolämer Hämodilution mit 5% Albumin oder 6% Hydroxyethylstärke und intraoperativer Retransfusion; eine prospektive randomisierte Untersuchung. Anaesthesist 50:569–579

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  33. Vink H, Duling BR (1996) Identification of distinct luminal domains for macromolecules, erythrocytes, and leucocytes within mammalian capillaries. Circ Res 79:581–589

    CAS  PubMed  Google Scholar 

Download references

Author information

Authors and Affiliations

Authors

Corresponding author

Correspondence to M. Rehm.

Appendix

Appendix

Berechnung des Volumeneffektes (in Prozent)

Das zugeführte Kolloid expandiert das PV und damit auch das gesamte BV. Der VE entspricht dem Verhältnis "Veränderung des Blutvolumens" (ΔBV) zu eingesetzter Menge Kolloid (K):

$$ {\rm{VE}}\left[ {\rm{\% }} \right]{\rm{ = }}\left\{ {{\rm{\Delta BV}}\left[ {{\rm{ml}}} \right]{\rm{/K}}\left[ {{\rm{ml}}} \right]} \right\}{\rm{ \times 100}} $$

Im Falle der isovolämischen Hämodilution ersetzt das Kolloid zusätzlich den Blutentzug (BE). Dieses ist bei der Berechnung von VE mit zu berücksichtigen und wird im Zähler zu der Änderung des Blutvolumens hinzuaddiert:

$$ {\rm{VE}}\left[ {\rm{\% }} \right]{\rm{ = }}\left\{ {\left( {{\rm{\Delta BV}}\left[ {{\rm{ml}}} \right]{\rm{ + BE}}\left[ {{\rm{ml}}} \right]} \right){\rm{/K}}\left[ {{\rm{ml}}} \right]} \right\}{\rm{ \times 100}} $$

Messung des Erythrozytenvolumens (in Milliliter)

Definitionen

FRCf: Anteil Fluoreszein-gelabelter Erythrozyten an allen Patientenerythrozyten.

RCi [Zahl/ml]: "red cells injected", die Zahl der injizierten Erythrozyten pro Milliliter.

Vi [ml]: Injektatvolumen.

RCp [Zahl/ ml]: "red cells of the patient", die Zahl der Erythrozyten im Patientenblut pro Milliliter.

HKTLV: "Large-vessel-Hämatokrit", Großgefäßhämatokrit, hier aus dem arteriellen Blut bestimmt.

Methodik und Berechnungen

Pro Messung inkubierten wir 20 ml Patientenblut mit 50 mg Fluoreszein (Fluoreszein-Narium®, Alcon, Freiburg). Nach mehreren Waschvorgängen wurde die Suspension markierter Erythrozyten über den zentralen Venenkatheter injiziert (Dauer: ca. 3 s). Jeweils 4, 6 und 8 min nach Injektion wurden Proben aus dem arteriellen Katheter entnommen und FRCf mit der Flowzytometrie bestimmt. Der gesuchte Wert entspricht dem Mittelwert von 3-mal 3 Messungen (jeweils 3 Messungen aus jeder der 3 entnommenen Proben). Bei jeder Messung wird die Anzahl der fluoreszierenden Erythrozyten aus insgesamt 50.000 Zellen mit dem Flowzytometer (FACScan, Becton Dickinson, Heidelberg) analysiert. Dieser Anteil gelabelter Erythrozyten an der Gesamtzahl der Erythrozyten innerhalb der Probe entspricht dem Verhältnis in der gesamten Patientenzirkulation, so dass folgende Gleichung aufgestellt werden kann:

$$ {\rm{F}}_{{\rm{RCF}}} {\rm{ = }}\left( {{\rm{V}}_{\rm{i}} {\rm{ \times RC}}_{\rm{i}} {\rm{ \times HKT}}_{{\rm{LV}}} } \right){\rm{/}}\left( {{\rm{RC}}_{\rm{P}} {\rm{ \times RCV}}} \right) $$

Aufgelöst nach RCV ergibt sich folgende Gleichung zur Berechnung des RCV:

$$ {\rm{RCV(ml) = }}{{\left( {{\rm{RC}}_{\rm{i}} *V_i *HKT_{LV} } \right)} \over {\left( {RC_p *F_{RCf} } \right)}} $$

RCi und RCp konnten mit Hilfe eines Zellcounters (Coulter Electronics, Miami, FL), HKTLV mit der Zentrifugation (12.000 UPM; 4 min) ohne Korrektur für Plasmatrapping ermittelt werden.

Messung des Plasmavolumens (in Milliliter)

Definitionen

CB0 [mol/l]: theoretische Konzentration des Farbstoffes ICG (Paesel, Frankfurt a.M., Germany) im Vollblut zum Zeitpunkt der Injektion.

CP0 [mol/l]: theoretische Konzentration des Farbstoffes ICG im Plasma zum Zeitpunkt der Injektion.

HKTLV: "Large-vessel-Hämatokrit", Großgefäßhämatokrit, hier aus dem arteriellen Blut bestimmt.

D [mol]: "dose", die applizierte Menge des Farbstoffes.

Methodik und Berechnungen

Kurz vor jeder Farbstoffinjektion führten wir zur exakten Bestimmung der ICG-Konzentration im Vollblut der Patientinnen eine Kalibrierung durch. Hierfür wurden 2-mal 10 ml Patientenblut mit bekannten ICG-Konzentrationen (1,25 μg/ml und 2,5 µg/ml Blut) verwendet. Die optische Dichte des Blutes bestimmten wir bei 800 nm und 900 nm mit einem Densitometer, das von einem der Autoren entwickelt wurde (H. Brechtelsbauer). Zur gleichen Zeit entnahmen wir Blutproben zur Bestimmung des HKTLV (durch Zentrifugation der Blutproben ohne Korrektur für Plasmatrapping; Variationskoeffizient <2%). Danach injizierten wir ICG in einer Dosierung von 0,25 mg/kg KG als Bolus über 5 s in den zentralen Venenkatheter (T0= Zeitpunkt der Injektion). Von der 2.–5. min wurde kontinuierlich mit Hilfe einer kalibrierten Pumpe Blut aus dem arteriellen Katheter entnommen und in einem geschlossenen System durch eine Küvette, die an das Densitometer angeschlossen war, geleitet. Die theoretische Extinktion zum Zeitpunkt der Injektion wurde durch monoexponentielle Rückwärtsextrapolation der Extinktionskurve (2.–5. min) zurück zum Zeitpunkt To ermittelt. Dieser Wert, mit der Kalibrierung in Beziehung gesetzt, ergibt CB0, die theoretische ICG-Konzentration im Vollblut zum Zeitpunkt T0. Es handelt sich hierbei also nicht um eine echte ICG-Konzentration, da die Erythrozyten nicht zum Verteilungsraum des Farbstoffes gehören. Daher ist eine Korrektur um den Anteil der in der Messkammer enthaltenen Erythrozyten erforderlich, um die Plasmakonzentration zum Zeitpunkt T0 zu erhalten:

$$ CP_0 = {{CB_0 } \over {\left( {1 - HKT_{LV} } \right)}} $$

Das gesuchte PV errechnet sich daraus wie folgt:

$$ PV = D/CP_0 $$

Rights and permissions

Reprints and permissions

About this article

Cite this article

Jacob, M., Rehm, M., Orth, V. et al. Exakte Messung des Volumeneffektes von 6%iger Hydroxyethylstärke 130/0,4 (Voluven®) während präoperativer akuter normovolämer Hämodilution. Anaesthesist 52, 896–904 (2003). https://doi.org/10.1007/s00101-003-0557-0

Download citation

  • Issue Date:

  • DOI: https://doi.org/10.1007/s00101-003-0557-0

Schlüsselwörter

Keywords

Navigation